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墨旱莲对香烟提取物杀伤NHBE细胞的保护作用及机制

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[摘要] 目的:研究墨旱莲提取物对香烟烟雾提取物(cigarette smoke extract,CSE)作用的正常肺细胞NHBE细胞的保护作用及其机制。方法:MTT法检测墨旱莲提取物对CSE诱导的NHBE细胞增殖的影响,DTNB比色法测定GSH含量,CDNB比色法检测GST活力,NADPH与2,6二氯靛酚钠(DCIP)测试NQO1活力,Western blot测定蛋白的表达。结果:墨旱莲提取物可以降低CSE对NHBE细胞增殖的抑制作用;恢复由CSE引起的细胞内GSH水平下降,降低诱导细胞中GST与NQO1活力及NQO1蛋白表达。结论:墨旱莲能够减少CSE对NHBE细胞的损伤,其机制可能与II相解毒酶相关。

[关键词] 墨旱莲;CSE;GSH;GST;NQO1

墨旱莲(Ecliptae Herba)为菊科植物鳢肠的地上部分,性寒,味甘、酸,富含皂苷、豆甾醇等物质[7]。具有止血、清热解毒、保护肝脏和心血管作用,在临床上用于治疗肺结核咯血和痢疾。研究表明,墨旱莲可以通过降低NFκB的表达进而抑制HeLa细胞增殖[8]。本实验研究了香烟烟雾提取物(cigarette smoke extract,CSE)对人支气管上皮细胞NHBE(normal human bronchial epithelial cells)中的还原型谷胱甘肽(GSH)水平,GST与NQO1活力和相关蛋白表达的影响,以及墨旱莲提取物(Ecliptae Herba extract,EHE)对诱导模型的干预作用,探讨墨旱莲对CSE作用下的NHBE细胞保护作用和机制。

1 材料

1.1 细胞与试剂 人支气管上皮细胞 NHBE(ATCC)。胰蛋白酶、胎牛血清(美国Gibco公司); 2,6二氯靛酚钠(DCIP, 日本TCI公司,批号MOBTE);还原型辅酶Ⅱ(NADPH, 批号20101210)、牛血清白蛋白(BSA)(瑞士Roche公司);二甲亚砜(DMSO);四噻唑蓝(MTT),十二烷基硫酸钠(SDS),Tris,丙烯酰胺,过硫酸铵(APS),四甲基乙二胺(TEMED),苯甲基磺酰氟(PMSF),甘氨酸(美国Sigma公司);RPMI 1640 培养基(批号20110127)、谷胱甘肽S转移酶测试盒(批号20110426)、谷胱甘肽测试盒(批号20110504) (南京建成生物工程研究所);RIPA细胞裂解液(编号P0013C, 碧云天生物技术研究所);抗NQO1抗体(批号D2711, 美国Santa Cruz公司)。

1.2 仪器 Class Ⅱ Biosafety Cabinet生物安全柜(美国Labconco公司);Nikon Eclipse TS100倒置显微镜(日本尼康公司);酶标仪(美国BIORAD公司); ZWA型微量振荡器(常州国华电器有限公司);HH60型数显恒温搅拌循环水浴锅(常州国华电器有限公司);AL204天平(瑞士METTLER TOLEDO公司);LDZX50K型立式压力蒸汽灭菌器(上海申安医疗器械厂);5430R冷冻离心机(德国艾本德公司);Nanodrop 1000微量紫外分光光度计;HERA CELL 500型CO2细胞培养箱(美国Thermo公司);电泳仪(美国BIORAD公司)。

1.3 墨旱莲提取物的制备 墨旱莲药材购于安徽井泉药业有限公司,批号20110701,经南京中医药大学药学院吴德康教授鉴定。取墨旱莲200 g,用10倍量的80%乙醇回流提取2次,每次2 h,旋转蒸发得到墨旱莲提取物,试验时提取物用80%乙醇溶解,经0.22 μm微孔滤膜过滤除菌,每组均加入不同乙醇使有机相浓度一致。

1.4 CSE的制备 在实验前30 min内参照Yunchao Su等的方法制备CSE[9]。取某品牌香烟1根,去掉过滤嘴,燃烧形成的烟雾溶于10 mL无血清培养基中,制成100%的CSE溶液,经0.22 μm微孔滤膜过滤后给药。

2 方法

2.1 细胞生存率测定 NHBE细胞用含10%灭活胎牛血清的1640培养基,于37 ℃,5%CO2 条件下培养,隔天换液,4 d传代。取生长状态良好的NHBE细胞,调整细胞为5×104 个/mL。取96孔细胞培养板,每孔加入细胞悬液100 μL,培养24 h后,加入10%CSE和墨旱莲提取物,使生药终浓度为0,7.8,15.7,31.3,62.5,125,250,500,1 000 μg·L-1,阴性对照组加入10 μL无血清培养基。继续培养24 h后,去除原培养基,用100 μL PBS清洗后加入100 μL无血清培养基,各组加入5%MTT,4 h后,去除培养基,每孔加入100 μL DMSO溶液,震荡10 min,置于酶标仪上于490,570 nm波长处检测吸光度A。

细胞生长抑制率=[(A570-A490)空白-(A570-A490)给药组]/(A570-A490)空白×100%

2.2 细胞培养及蛋白提取 取生长状态良好的细胞,用冰磷酸盐缓冲液洗2遍后,加入细胞裂解液,冰上裂解30 min,4 ℃下13 000 r·min-1离心5 min,收集上清,用微量分光光度计测定蛋白浓度。细胞裂解液在实验前加入PMSF使其浓度为1 mmol·L-1。

2.3 墨旱莲提取物对细胞GSH水平与GST活力的影响 取各组细胞裂解液,按照试剂盒说明书进行测定。在酶标仪下测定各组吸光度,计算得出细胞内GSH水平与GST活力。

2.4 墨旱莲提取物对NHBE细胞NQO1活力的影响 NQO1的活性是以2,6二氯靛酚(DCIP)的第2电子受体进行测定[10]。取定量好的蛋白5 μ加入0.9 mL反应缓冲液[含50 mmol·L-1 TrisHCl(pH 7.5),0.25 mmol·L-1 NADPH,80 μmol·L-1 DCIP],在 600 nm测定 3 min,以每毫克样品蛋白每分钟吸光度的下降值表示NQO1的活力。

NQO1活力=(A开始-A结束)/反应时间(3 min)/蛋白浓度

2.5 Western blot检测细胞中NQO1蛋白表达 细胞裂解液煮沸变性后进行SDSPAGE凝胶电泳,灌制5%浓缩胶,13%分离胶,上样量30 μL,恒压80 V 20 min,之后把电压提高到100 V,继续电泳90 min,然后恒流200 mA,120 min湿转,将蛋白从SDSPAGE凝胶转至PVDF膜上,BSA封闭后加入抗NQO1抗体(1∶200)孵育过夜,最后加入二抗孵育2 h,ECL显色。

2.6 统计学分析 数据用±s表示,采用SPSS 16.0统计软件经行方差分析,组间比较采用t检验,P<0.05为有显著性差异,P<0.01为有极显著性差异。

3 结果

3.1 墨旱莲提取物对NHBE细胞增殖的保护作用 CSE对NHBE有损伤作用,10%CSE作用24 h对细胞的抑制率为30.21%。在较低浓度下,墨旱莲可以有效降低CSE对NHBE的毒害作用,且有着量效关系,其中在125 μg·L-1下细胞的抑制率为18.39%。在较高的浓度下,墨旱莲具有一定的细胞毒作用,故后续试验药物浓度不超过250 μg·L-1,见图1。

3.2 墨旱莲提取物NHBE细胞内GSH含量的影响 CSE可以显著降低NHBE细胞内的GSH水平(P<0.05),用10%CSE处理NHBE细胞24 h,细胞内GSH水平下降至空白组的31.54%;而同时给予墨旱莲提取物可以减少细胞内GSH含量的降低,在15.7,31.3,62.5,125,250 μg·L-1质量浓度下,GSH含量分别为空白对照组的39.86%,46.39%,57.21%,72.38%,75.50%,见图2。

3.3 II相解毒酶活力测定 CSE可以极显著提高NHBE细胞内GST与NQO1的活力(P<0.01),用10%CSE作用 NHBE细胞24 h,细胞内GST活力提高为空白组的1.78倍;NQO1活力提高为空白组的2.14倍。而墨旱莲提取物同时给药组的GST与NQO1活力会显著降低(P<0.05),且呈量效关系,见图3,4。

3.3 NQO1蛋白表达的测定 Western blot结果显示,10%CSE作用24 h可以明显提高NHBE细胞中NQO1的蛋白表达,而同时给予半枝莲提取物可以

4 讨论

由于环境日益恶化,人们接触到多环芳香烃类、黄曲霉素、烟草和烟气、亚硝胺类的机会越来越多。其中吸烟是肺癌的最大诱因,80%~90%的肺癌是由吸烟引起,30%由癌症引致的死亡是出于吸烟。而被动吸烟也会明显地增加非吸烟者患上肺癌等疾病的机会。CSE含有超过4 000种化学成分,其中包括多种有毒成分,可通过不同的途径作用于上皮细胞、平滑肌细胞和免疫细胞,影响呼吸系统的功能,这些致癌物进入人体后首先经过I相代谢酶(如CYP450)的作用,形成亲电子的活性中间体,它们会攻击细胞中的大分子,比如DNA和蛋白质,导致癌症的发生。而体内的II相代谢可以使亲电子的致癌物或其中间体解毒及去除,其主要作用机制是通过将这些亲电子化学物质硫酸化、糖脂化、谷胱甘肽化或中和。而这些反应都是由II相解毒酶介导的,故有毒有害物质可以激活细胞内的自我防护机制,提高II相解毒酶的表达及活力。GST其主要作用是催化还原型谷胱甘肽(GSH)与亲电子物质结合,继而排出体外;与胆红素、甾醇等亲脂性物质相结合,抑制脂质过氧化作用;NQO1将体内的醌类等异源性物质还原为氢醌,继而被结合排泄,避免醌类物质转化为半醌类,从而达到保护细胞的作用;GSH是体内重要的抗氧化剂,可清除自由基等氧化剂。

在本实验中,CSE可以引起NHBE细胞的氧化应激,细胞启动自我防护机制,具体表现为提高NQO1蛋白的表达,继而诱导II相解毒酶NQO1活力及表达的升高,GST活力也有提高,消耗GSH使其含量降低,但是仍有部分NHBE细胞的损伤及死亡。而加入墨旱莲提取物后,细胞内各项指标均有恢复到正常水平的趋势,说明墨旱莲具有抗氧化的功效,可以保护CSE对NHBE细胞的损伤,其作用机制可能为减少CSE的氧化应激。

[参考文献]

[1] Rahman I, Biswas S K, Kode A. Oxidant and antioxidant balance in the airways and airway diseases[J]. Eur J Pharmacol,2006,533:222.

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[3] Alexandria Lau, Nicole F Villeneure, Zheng Sun, et al. Dual roles of Nrf2 in cancer[J]. Pharm Res,2008(58):262.

[4] Saldivar S J,Wang Y F,Zhao H,et al. An association between a NQO1genetic polymorphism and risk of lung cancer[J]. Mutat Res, 2005, 582 :71.

[5] Zhao C R, Gao Z H, Qu X J. Nrf2ARE signaling pathway and natural products for cancer chemoprevention[J]. Cancer Epidemiol, 2010,34(5):523.

[6] Wydzia Biochemii, Biofizykii Biotechnologii. Role of Nrf2 transcription factor in cellular response to oxidative stress[J]. Postepy Biochem, 2010,56(2):147.

[7] 韩英,夏超等. 墨旱莲化学成分及药理活性的初步研究[J]. 中国中药杂志,1998,23(11):680.

[8] M Kobori, Z Yang, D Gong, et al. Wedelolactone suppresses LPSinduced caspase11 expression by directly inhibiting the IKK complex [J]. Cell Death Differ, 2004, 11: 123.

[9] Yunchao Su, Weihong Han. Effect of cigarette smoke extract on nitric oxide synthase in pulmonary artery endothelial cells[J]. Am J Respir Cell Mol Biol, 1998(19):819.

[10] Christopher M Cabello, Warner B. Antimelanoma activity of the redox dye DCPIP (2,6Dichlorophenolindophenol) is antagonized by NQO1[J]. Biochem Pharmacol, 2009,78(4): 344.

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