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达托霉素菌种16SrRNA基因序列分析和遗传稳定性检验

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材料

3.1.1 菌种

由江苏恒瑞医药股份有限公司提供的样品MS-1,原辅料达托霉素种子批。

3.1.2 主要培养基、试剂及缓冲液配置

2升LB培养基的配制:分别称取氯化钠(AR)20.0克,胰化蛋白胨(CP)20.0克,酵母抽提物(CP)10.0克于2升洁净干燥的刻度烧杯中,加入约1.8升蒸馏水,用玻璃棒搅拌至溶解均匀,再用蒸馏水定容至2.0 升。

磷酸盐母液配方:340mmol/L KH2PO4/1.44 mol/L K2HPO4的溶液4.62g的磷酸二氢钾和25.08g磷酸氢二钾(32.86g K2HPO4.3H2O)溶在足量的水中,使终体积为100ml。

Platinum R TaqDNA聚合酶、缓冲液体系、定制引物均由LifeTechnologiesTM提供;TA克隆使用的是TAKARA的pMDTM18-TVectorCloningKit;基因组DNA提取试剂盒,凝胶回收试剂盒,质粒小抽试剂盒均由上海硕美生物提供。

3.1.3 培养基分装灭菌处理

将配好的培养基溶液分装于专用试剂瓶内,盖紧瓶盖后再将瓶盖拧松一圈(防止高压下瓶子爆裂),并在瓶盖外包上铝箔纸。同批培养基若有不同种类,标注特别标识。

把装有培养基的试剂瓶放入灭菌锅内灭菌,设定灭菌温度为121摄氏度、时间为20分钟、压力控制在0.1-0.15MPa。灭菌完毕后,从灭菌锅中取出试剂瓶,将其冷却至室温(不烫手便可)后,将瓶盖拧紧,放入冰箱中冷藏备用。

3.1.4 培养基加入抗生素處理

实验前,分别在上述已经冷却的培养基中加入一定体积的AMP/KAN储备液,配成AMP/KAN抗生素培养基。

其它抗生素培养基在实验过程中加入,在无抗性的培养基中加入一定体积的储备液,具体添加储备液浓度、加药量、加水量、加乙醇量、培养基中储备液加入量如下表所示。

储备液的配制溶剂为乙醇(AR)或去离子水,自行保存管理,放置于冰箱冷冻室进行保存,保存期限为六个月。

3.1.5 实验仪器

采用ABI9700型PCR仪进行PCR扩增,使用ABI3730XL型DNA测序仪进行测序。

3.2 16SrRNA基因序列分析试验方法

3.2.1 试验步骤

按照以下的方法步骤,开展16SrRNA基因序列分析:

第一步 根据目的序列设计并合成16s序列,引物序列如下图;

第二步 按试剂盒说明操作,从提供的菌体中提取出基因组DNA;

第三步 以提取的模板和设计的引物进行PCR反应,2%琼脂糖凝胶电泳检测产物;

第四步 产物直接测序,双向引物测通,同时进行TA克隆;

第五步 TA克隆测序结果出来后与产物结果进行比对,是否一致;

第六步 对测序结果进行Blast,并展示结果。

3.2.2 结果与数据分析

(1)鉴定结果

鉴定结果如图1所示(图a为DL2000标准maker,图b为pcr产物跑胶鉴定结果及与maker的对比),电泳跑胶结果显示片段大小在1500bp左右,与16S rRNA序列理论大小一致。

(2) 样品MS-1测定序列

样品MS-1测定序列如下表所示:

(3)Blast结果

通过NCBI网站进行数据比对, Blast结果如下表所示:

3.3 遗传稳定性检测试验方法

3.3.1 试验步骤

按照以下的方法步骤,开展遗传稳定性检测试验:

第一步 根据目的序列设计并合成特异引物,引物序列如下表;

第二步 按试剂盒说明操作,从提供的菌体中提取出基因组DNA;

第三步以提取的模板和设计的引物进行PCR反应,2%琼脂糖凝胶电泳检测产物;

第四步产物可以直接测序,双向引物测通,同时进行TA克隆;

第五步TA克隆测序结果出来后与产物结果进行比对,是否一致;

第六步对测序结果进行Blast,并展示结果。

3.3.2 结果与数据分析

(1)鉴定结果

鉴定结果如图2所示(图a为DL2000标准maker,图b为pcr产物跑胶鉴定结果及与maker的对比): 电泳跑胶结果显示片段大小在700bp左右,与分析遗传稳定性的特征序列理论大小一致。

(2)样品MS-1测定序列

样品MS-1测定序列如下表所示:

(3)Blast结果

NCBI网站进行数据比对,结果如下表:

结论:目的条带明显,大小在600-700bp左右,与Streptomyces 菌株同源性最高为99%。

4.结论与讨论

测得16S rRNA序列与Streptomyces 菌株同源性最高为99%,NCBI网站进行数据比对,Streptomycessp同源性达到99.86%。表明江苏恒瑞医药股份有限公司提供的样品MS-1,原辅料达托霉素种子批是能够稳定表达和传代的菌株,可用于医药工业批量生产中。

参考文献:

[1] 高芳霞,俞岩青,王昆蓉,谢云,张洪兰,冉启平,田敏. 常压室温等离子体及紫外复合诱变选育达托霉素高产菌株[J]. 中国抗生素杂志,2016,41(06):425-428.

[2] 廖国建,何颖,谢建平. 以达托霉素产生菌菌株改造为主线的微生物工程综合实验的探索和实践[J]. 微生物学通报,2018,45(03):713-716.

[3] 刘体颜. 达托霉素生物合成基因簇异源表达及调控机制初步研究[D].安徽大学,2013.

[4] 范晶华. 达托霉素高产菌株选育及发酵条件优化[D].天津大学,2007.

[5] 杨一恭. 达托霉素的菌种选育及发酵条件的优化研究[D].浙江工业大学,2015.

[6] 卢文玉,闻建平,范晶华,曹博翔,孙冰. 激光诱变玫瑰孢链霉菌结合链霉素抗性筛选法选育达托霉素高产菌株[J]. 微生物学通报,2006(03):114-117.

[7] 张智翔,段然,敬科举,吴意珣,卢英华. 组合抗性筛选法选育达托霉素高产菌株[J]. 中国抗生素杂志,2012,37(03):202-206+219.

[8] 洪娟,刘佳佳. 达托霉素的作用机制和药物来源的研究进展[J]. 广州化工,2012,40(09):28-30.

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